Введение

Роль бесконечно малого в природе бесконечно велика.

Луи Пастер

Люди существуют в мире полном разнообразных микроорганизмов. Большинство из них безвредны, другие даже полезны, однако есть и те, кто способен при определённых условиях вызывать инфекционные заболевания. В местах массового скопления людей эта проблема приобретает особую значимость, одним из таких мест является общеобразовательное учреждение.

Школа представляет собой сложную микробиологическую среду, где ежедневно взаимодействуют сотни людей: ученики, учителя, технический персонал. В процессе учебной деятельности они многократно контактируют с различными поверхностями – партами, дверными ручками, перилами, выключателями, компьютерным оборудованием, сантехникой и другими. Всё это создаёт благоприятные условия для циркуляции микроорганизмов, накопления их на данных поверхностях. Особенно это заметно в периоды сезонных подъёмов заболеваемости, когда даже незначительные нарушения санитарных правил и норм могут привести к быстрому распространению инфекций среди школьного сообщества.

Именно поэтому систематическая оценка уровня обсеменённости контактных поверхностей и проверка эффективности средств для снижения микробной нагрузки являются критически важными шагами к обеспечению здоровой и безопасной среды в общеобразовательном учреждении. Изучение вопроса обсеменённости объектов и профилактики инфекций заинтересовал меня больше всего.

Цель: исследование контактных поверхностей учебного класса на наличие условно-патогенных и непатогенных микроорганизмов и выявления влияния обработки на них для создания видеоролика с рекомендациями по гигиене.

Гипотеза: предполагаю, что контактные поверхности учебного класса загрязнены условно-патогенными и непатогенными бактериями, а также, что обработка поверхностей антисептическими/дезинфицирующими растворами на основе спирта и/или хлорсодержащих соединений значительно снижает микробную обсеменённость по сравнению с необработанными участками или участками, очищенными только водой.

Для достижения поставленной цели и подтверждения или опровержения моей гипотезы мне нужно решить следующие задачи:

• узнать об инфекциях и их причинах;

• познакомиться с понятием обсеменённости поверхностей;

• познакомиться с классификацией и особенностями разных видов бактерий;

• рассмотреть меры профилактики инфекций в образовательных учреждениях;

• провести сбор смывов с исследуемых объектов;

• культивировать собранные пробы и проанализировать результаты обработки;

• определить наличие условно-патогенных штаммов бактерий среди полученных колоний;

• разработать рекомендационный видеоролик по гигиене.

Методы исследования:

• теоретические: изучение методического материала и научной литературы;

• практические: измерение, эксперимент, наблюдение, сравнение, анализ.

Объект исследования: рабочие поверхности вторых парт первого, второго и третьего ряда, а также поверхность ручки двери кабинета биологии МБОУ «СОШ №112» г. Трёхгорного Челябинской области.

Предмет исследования: степень микробной обсеменённости поверхностей исследуемых объектов до и после обработки.

2. Основная часть

2. 1. Инфекционные заболевания

Человечество не первое столетие борется с инфекционными заболеваниями, однако решить эту проблему полностью так и не удалось. Инфекции продолжают оказывать существенное влияние на здоровье людей во всём мире. Ежегодно и в России фиксируются вспышки инфекционных заболеваний различной этиологии.

Инфекционные заболевания – это группа заболеваний, вызываемых различными патогенными микроорганизмами.

Из литературы я узнал, что существуют различные классификации инфекционных заболеваний. В своей работе я рассмотрел лишь некоторые из них (по способу развития, по типу возбудителя, по способу передачи).

По способу развития такие заболевания делят на два вида:

• экзогенные (проникновение микроорганизма извне);

• эндогенные (нарушение работы собственной микрофлоры).

По типу возбудителя инфекции подразделяют на пять основных групп, представленных в таблице (Таблице № 1).

Таблица № 1.

Группа	Тип возбудителя	Примеры заболеваний
Бактериальные	бактерии	Туберкулёз, Тиф, Холера, Сальмонеллёз, Дизентерия и др.
Вирусные	вирусы	Грипп, COVID, Ротавирус, Норовирус, Корь, Оспа и др.
Грибковые	грибы	Кандидоз, Трихофития, Микроспория, Руброфития, Аспергиллёз и др.
Протозойные	простейшие	Малярия, Лямблиоз, Трипонасомоз, Лейшманиоз, Токсоплазмоз и др.
Прионные	инфекционные белки	Болезнь Крейцфельдта-Якоба, Куру, ФСИ и др.

Большинство инфекционных заболеваний являются инфекциями экзогенного типа и передаются различными способами, которые я отразил в таблице (Таблица № 2).

Таблица № 2.

Способ передачи	Путь передачи	Предмет передачи
Фекально-оральный	Пищевой	Еда
	Водный	Вода
	Контактно-бытовой	Предметы ухода
Аэрогенный	Воздушно-капельный	Частицы слизи при кашле или чихании
	Воздушно-пылевой	Пыль
Трансмиссивный	Гемоконтактный	Кровь/кровососущее насекомое
	Трансплацентарный	Медицинские принадлежности
Контактный	Прямой контакт	(Отсутствует)
	Через предметы обстановки	Мебель

Рассмотрев данные классификации, я пришёл к выводу, что в школе одними из часто встречающихся типов инфекций являются экзогенные бактериальные инфекции, передающиеся через предметы обстановки контактным путём. Меня заинтересовал вопрос, что является их причиной, и какие возбудители есть на контактных поверхностях учебного класса.

2. 2. Что такое обсеменённость?

Из различных источников информации я узнал, что одной из основных причин возникновения бактериальных инфекций, передающихся контактным путём, являются биологические загрязнения поверхностей, а также, что для оценки характера загрязнения, существует такой санитарный показатель, как обсеменённость.

Обсеменённость – это санитарно-эпидемиологический показатель, который характеризует степень загрязнения объекта микроорганизмами.

Для определения микробной обсеменённости проводят бактериологические исследования, включающие в себя следующие этапы:

1. Отбор проб;

2. Транспортировка и хранение проб;

3. Подготовка проб;

4. Посев на питательные среды;

5. Культивирование;

6. Подсчёт и идентификация;

7. Интерпретация результатов.

Методы, используемые для оценки микробной обсеменённости объектов, представлены на схеме (Схема № 1).

Схема № 1.

Санитарно-микробиологические методы подразделяют на две категории: прямые и косвенные.

Прямые методы направлены на непосредственное обнаружение патогенных микроорганизмов в окружающей среде. Тем не менее, прямое выявление патогенных микроорганизмов сталкивается с рядом сложностей, вызванных, главным образом, их низкой концентрацией в воздухе, воде и почве, где они обычно не способны к размножению. Поэтому в практике санитарно-микробиологических исследований чаще используются косвенные методы, которые указывают на возможное присутствие патогенных микроорганизмов.

Косвенные методы могут быть разделены на качественные и количественные. Качественные методы позволяют лишь установить наличие или отсутствие микроорганизмов в исследуемом образце. В то же время, количественные методы дают возможность определить степень микробного загрязнения окружающей среды и, следовательно, их потенциальную угрозу для здоровья человека.

Также мне было необходимо познакомится с санитарно-показательными микроорганизмами, так как их наличие на поверхностях может указывать на загрязнение условно-патогенными бактериями, поэтому нахождение их в моих исследованиях поможет доказать выдвинутую мной гипотезу. Санитарно-показательные микроорганизмы, представлены на схеме (Схема № 2).

Схема № 2.

Рассмотрев теоретический материал в своей работе, я решил проводить анализ проб качественным методом исследования обсеменённости объектов, так как для подтверждения моей гипотезы достаточно факта наличия или отсутствия санитарно-показательных микроорганизмов на поверхностях.

2. 3. Бактерии и их классификации

Так как в проекте меня будет интересовать бактериальная обсеменённость объектов – причина бактериальных инфекций, я решил ознакомиться с их непосредственными возбудителями.

Из школьной программы мне известно, что бактерии – это одноклеточные прокариотические микроорганизмы, не имеющие оформленного ядра и мембранных органоидов. Они являются одними их древнейших микроорганизмов, населяющих все среды жизни. А благодаря быстрому делению и мутациям могут приспосабливаться к любым её условиям. Бактерии имеют важное значение в экосистемах, являясь редуцентами и поддерживая круговорот веществ.

Представители царства Бактерий разнообразны и имеют особенное строение и классификации, которые я разместил ниже.

Строение бактерий представлено на рисунке (Рисунок № 1).

Рисунок № 1.

Из литературы я узнал, что бактерии имеют множество классификаций. В своей работе я решил рассмотреть основные из них (по типу питания, по отношению к кислородной среде, по форме клеток, по строению клеточной стенки), на которые в последствии я буду опираться при работе над практической частью. Каждую из этих классификаций я отразил в таблице.

По типу питания бактерии делятся на три группы, представленные в таблице (Таблица № 3).

Таблица № 3.

Название	Описание
Автотрофы	сами создают органические вещества
Гетеротрофы	питаются готовыми органическими веществами
Миксотрофы	одновременно сочетают различные типы питания

По отношению к кислороду бактерии классифицируются на пять групп, размещённых в таблице (Таблица № 4).

Таблица № 4.

Название	Взаимоотношения с кислородной средой	Основной тип обмена веществ	Схема идентификации
Облигатные аэробы	всегда нуждаются в присутствии кислорода	аэробное дыхание
Факультативные аэробы	могут расти как в присутствии кислорода, так и без него	брожение, анаэробное или аэробное дыхание
Микроаэрофилы	кислород необходим для жизни, но губителен в избытке	аэробное дыхание
Аэротолерантные анаэробы	кислород не влияет на рост	брожение
Облигатные анаэробы	кислород подавляет метаболизм и может привести к гибели	анаэробное дыхание или брожение
Примечание к схеме идентификации:

Классификацию бактерий по форме клеток отразил в таблице (Таблица № 5).

Таблица № 5.

Название	Описание	Внешний вид
Кокки	сферические или овальные клетки
Бациллы	палочковидные клетки
Вибрионы	изогнутые в виде запятой клетки
Спириллы	негнущиеся спиралевидные клетки с одним или несколькими витками
Спирохеты	гнущиеся спиралевидные клетки с несколькими витками
Иные формы	треугольная, прямоугольная, звёздчатая и другие

Классификацию бактерий по строению клеточной стенки занёс в таблицу (Таблица № 6).

Таблица № 6.

Название	Описание	Строение стенки
Грамположительные	имеют толстую клеточную стенку, состоящую из многих слоёв пептидогликана и тейхоевых кислот, при окрашивании по Граму имеют фиолетовый цвет, в реакциях с щелочами не образуют вязкой тягучей консистенции
Грамотрицательные	имеют тонкую клеточную стенку, включающую несколько слоёв пептидогликана, поверх покрытую второй мембраной с липополисахаридами и липопротеинами, при окрашивании по Граму имеют розовый цвет, в реакциях с щелочами образуют вязкую тягучую консистенцию
Лишённые клеточной стенки	содержат только цитоплазматическую мембрану	——

Знакомство с данными классификациями поможет мне верно интерпретировать полученные результаты в ходе экспериментов в практической части проекта.

2. 4. Профилактика инфекционных заболеваний в школе

Древнегреческий врач Гиппократ говорил: «Болезнь лучше предупредить, чем лечить». Именно поэтому профилактика заболеваний имеет важное значение в сохранении здоровья человека.

Профилактика инфекционных заболеваний – это комплекс мер, направленных на предотвращение возникновения и распространения инфекций.

В образовательных учреждениях такие профилактические работы особенно важны. Постоянные контакты между членами школьного сообщества, неосведомлённость и/или отсутствие культуры личной гигиены большинства школьников могут способствовать распространению инфекций.

В учебных заведениях профилактические меры по предупреждению инфекционных заболеваний подразделяют на несколько основных блоков:

• Санитарно-гигиенические меры;

• Школьные врачебно-медицинские меры;

• Информационно-просветительская деятельность;

• Контроль санитарных показателей.

Благодаря этим мерам учебные заведения поддерживают здоровье учащихся и работников школы, предотвращая риски возникновения эпидемиологических ситуаций.

В рамках работы над своим проектом я решил подробнее познакомится со следующими санитарно-гигиеническими мерами, применяемыми в школе:

1. дезинфекция;

2. соблюдение правил личной гигиены.

Из литературы я узнал, что дезинфекция – это комплекс мероприятий, направленных на уничтожение (или существенное снижение численности) патогенных и условно‑патогенных микроорганизмов.

Регулярная дезинфекция в образовательном учреждении помогает уничтожить возбудителей болезней на контактных поверхностях и в воздухе, снижая вероятность их передачи между членами школьного сообщества. Основой для проведения дезинфекции в школах служат Санитарные правила и нормы (СанПиН).

Основными методами дезинфекции, применяющимися в образовательных учреждениях, являются:

• химические (применение дезинфицирующих растворов и спреев);

• физические (применение термических и механических методов обработки);

• аэрозольные (применение методов холодного/горячего тумана).

Основные виды дезинфекции в школе занёс в таблицу (Таблица № 7).

Таблица № 7

Вид	Время проведения	Описание
Текущая	ежедневно	поддержание нормативного уровня чистоты в течение учебного года, включает обработку контактных поверхностей, пола и санитарных помещений с использованием дезинфекционных средств
Заключительная	после окончания учебного периода/года или в случае вспышек инфекций	более глубокая и тщательная обработка всех доступных поверхностей и помещений при поддержке специальных организаций

В моей работе меня будет интересовать влияние антисептической/дезинфицирующей обработки контактных поверхностей на микробную обсеменённость, поэтому я решил рассмотреть, какие химические растворы применяются для дезинфекции в учебных учреждениях.

Для ежедневной обработки контактных поверхностей в школах используются сертифицированные средства IV класса опасности.

Чаще всего из них применяются:

• хлорсодержащие;

• спиртовые;

• ЧАС (четвертичные аммониевые соединения);

• перекись водорода.

В моей школе обработка контактных поверхностей производится растворами хлорсодержащих соединений.

Хлорсодержащие антисептики/дезинфектанты – это группа дезинфицирующих средств, в состав которых входит активный хлор. Они эффективны против бактерий, вирусов, грибков, спор микроорганизмов.

Механизм действия данной группы дезинфицирующих средств основан на окислительных свойствах хлора:

• при контакте с водой образуется хлорноватая кислота (HClO);

• кислота распадается с выделением атомарного кислорода, который окисляет белки и другие компоненты микробных клеток;

• происходит разрушение клеточных мембран, нарушение клеточного дыхания и внутриклеточного синтеза белка;

• микроорганизмы погибают.

Для проверки влияния обработки на обсеменённость контактных поверхностей при проведении исследований я планирую использовать применяемый в моей школе антисептический/дезинфицирующий раствор и дополнительно подберу иной хлорсодержащий антисептик/дезинфектант для сравнительного анализа.

Ещё одной из наиболее эффективных мер профилактики инфекционных заболеваний в школе является соблюдение правил личной гигиены членами школьного сообщества.

Правила личной гигиены – это совокупность гигиенических правил, выполнение которых способствует укреплению и сохранению здоровья человека. Указанные правила включают в себя уход за телом, питанием, одеждой, обувью, а также правила гигиены жилища.

Большинство членов школьного сообщества хорошо знакомо с данными правилами гигиены, однако по разным причинам (лень, вредные привычки, отсутствие страха перед невидимой угрозой и другие) пренебрегают их соблюдением.

Поэтому я планирую после получения результатов своих исследований разработать видеоматериал с рекомендациями по гигиене для учащихся школы с целью напоминания важности соблюдения данных правил.

2. Практическая часть

В практической части своей работы я решил исследовать контактные поверхности учебного класса биологии МБОУ «СОШ №112» г. Трёхгорного Челябинской области (далее школа) на наличие условно-патогенных и непатогенных микроорганизмов и выявить влияние обработки на них для создания рекомендационного видеоролика по гигиене.

Для эффективной реализации практической части проекта я разбил работу на несколько этапов: подготовительный, экспериментальный и рекомендационный.

Все этапы практической части работы будут проводиться на базе школы и производственной химико-микробиологической лаборатории МУП «МПОЭ» г. Трёхгорного Челябинской области (далее лаборатория). Курировать мою работу на базе лаборатории будет лаборант-микробиолог Звонова Лидия Викторовна.

Для реализации практической части моего проекта мне потребовалось следующее оборудование и средства индивидуальной защиты (далее СИЗы):

• школьное оборудование (маркер, ведро, салфетки);

• лабораторное оборудование (пробирки, чашки Петри, предметные стёкла, тупферы, штативы для пробирок, переносной холодильник, холодильная камера, кастрюли, термостат, ламинарный бокс, микробиологическая петля, спиртовка, спички, pH-метр, мерные стаканы, весы, фильтровальная бумага, автоклав);

• СИЗы (халат, перчатки, маски, бахилы, шапочки).

2. 1. Подготовительный этап

На подготовительном этапе своей работы мне было необходимо ознакомиться с методическим материалом и морфологией интересующих меня бактерий, составить план работы для экспериментального этапа, а также сделать заготовки, необходимые для его проведения. Это позволит в дальнейшем наиболее эффективно провести экспериментальный этап практической части моего проекта.

2. 1. 1. Изучение методик и техники безопасности

В первую очередь на подготовительном этапе я решил изучить методические материалы, связанные с методами санитарно-бактериологического исследования микробной обсемененности объектов внешней и внутренней среды
(МУ 2.1.4.1057-01 [9] и MP 4.2.0220-20. 4.2. [10]).

Изучение данных методик было необходимо мне для корректной реализации сбора смывов, культивации и последующего исследования полученных проб в ходе экспериментального этапа практической части.

Для реализации исследований и допуска в лабораторию я прошёл инструктаж по технике безопасности, а также был ознакомлен с устройством лаборатории и правилами работы на её территории.

2. 1. 2. Морфологическое описание искомых колоний

В практической части своего проекта я решил проводить эксперименты на выявление общего микробного числа (далее ОМЧ) и наличия бактерий группы кишечной палочки (далее БГКП) в смывах с контактных поверхностей учебного класса. Указанные эксперименты позволят подтвердить или опровергнуть факт обсеменённости контактных поверхностей микроорганизмами, а также присутствие на них условно-патогенных бактерий.

Для идентификации колоний БГКП мне необходимо было ознакомиться с морфологическими особенностями данной группы бактерий.

Отличительные особенности колоний основных видов БГКП:

1. Escherichia coli – грамотрицательные палочки, оксидаза‑отрицательны, индол‑положительны, ферментируют глюкозу, лактозу, маннит, мальтозу и сахарозу с образованием кислоты и газа, на среде Эндо образуют выпуклые красные колонии с металлическим блеском, подвижны, не образуют сероводород, капсулы не имеют.

2. Citrobacter freundii – грамотрицательные палочки, оксидаза‑отрицательны, индол‑отрицательны (реже – слабоположительны), ферментируют глюкозу с образованием кислоты и газа, лактозу – вариабельно, маннит – не всегда, на среде Эндо образуют колонии от бледно‑розовых до красных, часто полупрозрачные, подвижны, могут образовывать сероводород, капсулы не имеют.

3. Enterobacter aerogenes – грамотрицательные палочки, оксидаза‑отрицательны, индол‑отрицательны, ферментируют глюкозу, лактозу и маннит с образованием кислоты и газа, на среде Эндо дают бледно‑розовые или розовые колонии без металлического блеска, подвижны, не образуют сероводород, могут образовывать капсулу.

4. Klebsiella pneumoniae – грамотрицательные палочки, оксидаза‑отрицательны, индол‑отрицательны, ферментируют глюкозу и маннит с образованием кислоты и газа, лактозу – медленно или вариабельно, на среде Эндо формируют крупные слизистые колонии розовато‑красного цвета (из‑за капсулы), неподвижны, не образуют сероводород, имеют выраженную полисахаридную капсулу.

За основу для подтверждения БГКП-принадлежности я взял химико-аналитические показатели данных бактерий. Для удобства дальнейшей интерпретации полученных мною результатов в ходе экспериментов я представил информацию об этих показателях в виде таблицы (Приложение II, Таблица № 1).

2. 1. 3. Построение алгоритма работы

Для успешного проведения экспериментального этапа практической части проекта, опираясь на методические материалы, мною было принято решение построить строгий алгоритм проведения исследований.

Общий алгоритм работы для экспериментальных недель (далее ЭН):

1. День 1 ЭН:

• получение стерильных пробирок с пептонной водой 1 % в лаборатории;

• транспортировка пробирок в переносном холодильнике до места сбора смывов;

• по окончании учебного процесса в школе сбор смывов с контактных поверхностей учебного класса биологии;

• занесение даты и времени сбора смывов в итоговую таблицу;

• транспортировка пробирок с материалом в переносном холодильнике до лаборатории;

• размещение пробирок с материалами в термостате при температуре 37 ± 1°С на 24 астрономических часа (далее АЧ).

2. День 2 ЭН:

• пересеивание культивированных материалов в ламинарном боксе лаборатории на питательный Агар в чашки Петри (для исследования ОМЧ);

• пересеивание культивированных материалов в ламинарном боксе лаборатории на питательную среду Эндо в чашки Петри (для исследования БГКП);

• размещение чашек Петри с пересеянными пробами в термостате при температуре 37 ± 1°С на 48 АЧ.

3. День 3 ЭН:

• "качественный" анализ полученных результатов с занесением в итоговую таблицу (для исследования ОМЧ);

• сортировка микробиологических образцов по наличию роста колоний на них (для исследования БГКП);

• отражение информации о чистых пробах на БГКП в итоговой таблице (при их наличии);

• исследование колоний из проб на БГКП-принадлежность через грамм-принадлежность и оксидазу с последующим занесением результатов в итоговую таблицу;

• пересеивание тех же колоний в ламинарном боксе лаборатории в пробирки со средой Гисса и размещение их в термостате при температуре 37 ± 1°С и 44 ± 1°С на 72 АЧ;

• пересеивание тех же колоний в ламинарном боксе лаборатории в пробирки с лактозо-пептонной средой и размещение их в термостате при температуре 44 ± 1°С на 72 АЧ.

4. День 4 ЭН:

• анализ полученных результатов исследований на индол, а также кислоту/газ;

• занесение результатов в итоговую таблицу;

• формулирование выводов по данным из таблицы;

• уничтожение всех микробиологических проб в автоклаве лаборатории.

2. 1. 4. Подготовка к проведению экспериментов

Для проведения экспериментов мне необходимо было сделать заготовки: питательные среды, стерильную посуду, антисептические растворы и таблицу исследований.

1. Питательные среды.

Питательная среда – это однокомпонентный или многокомпонентный субстрат, применяемый для культивирования микроорганизмов или культур клеток высших организмов. [11]

Для проведения исследований моей экспериментальной части мне были необходимы: пептонная вода 1%, среда Эндо, питательный Агар, среда Гисса, лактозо-пептонная среда.

Подготовка указанных сред проводилась в лаборатории на основе имеющихся ГОСТов с учётом сроков хранения.

2. Стерильная посуда.

Стерилизация – полное уничтожение микроорганизмов (включая бактерии, грибы и вирусы) и их спор на различных изделиях, поверхностях и препаратах. Осуществляется термическим, химическим, радиационным, фильтрационным методами. [11]

Стерильная посуда была необходима для сбора, хранения, обработки и транспортировки образцов проб. Стерилизация посуды для моих экспериментов проводилась в лаборатории при помощи стерильных шкафов и автоклава (Приложение I, Фото 1).

3. Антисептические/дезинфицирующие растворы.

Для исследований влияния обработки на обсеменённость поверхностей при сборе экспериментального материала мне потребовались два разных антисептических/дезинфицирующих раствора на основе спирта и/или хлорсодержащих соединений: хлоргексидин биглюконат и “Алмадез-Хлор” (Приложение I, Фото 2, 3).

Раствор хлоргексидина биглюконата был приобретён в аптеке, а раствор школьного антисептика/дезинфектанта “Алмадез-Хлор” (далее школьный антисептик) заготавливался перед процессом сбора согласно инструкции на упаковке.

4. Таблица исследований (далее итоговая таблица).

Для удобства фиксации результатов экспериментов, а также дальнейшего анализа, сравнения и формулирования выводов я разработал итоговую таблицу для экспериментального этапа моего проекта (Приложение II, Таблица № 2).

2. 2. Экспериментальный этап

Экспериментальный этап практической части моего проекта был проведён с 27.10.2025г. по 29.12.2025г. и включал в себя:

• проведение экспериментов на тестовой неделе;

• проведение экспериментов на основных неделях;

• обработка и анализ полученных данных;

• формулирование выводов по итогам экспериментального этапа.

За весь период экспериментального этапа я провёл один блок экспериментов на ОМЧ и четыре блока экспериментов на БГКП (с учётом тестовой недели). Проведение тестовой недели было необходимо для отработки сбора смывов, проведения экспериментов в условиях лаборатории на основе методик, тестирования и корректировки алгоритма работы, внесения структурных правок в итоговую таблицу.

2. 1. 1. Сбор экспериментального материала для исследований

Сбор экспериментального материала (далее смывов) с контактных поверхностей для исследований проводил на базе школы после уроков. В качестве контактных поверхностей были выбраны рабочие поверхности вторых парт первого, второго и третьего ряда, а также поверхность ручки двери кабинета биологии. Указанный мной кабинет наиболее интенсивно используется в учебном процессе учащимися средней и старшей школы.

С учётом знаний, полученных при изучении методических материалов, процесс сбора смывов осуществлялся в следующем порядке (для всех экспериментальных недель):

1. Забрал заранее заготовленные стерильные пробирки с пептонной водой 1% и тупферами (см. п. 3.1.4.) из лаборатории и доставил их в школу в переносном холодильнике (Приложение I, Фото 4, 5).

2. Перед началом сбора смывов надел СИЗы и подготовил раствор школьного антисептика (см. п. 3.1.4.).

3. Для удобства выполнения работ по сбору смывов проименовал маркером пробирки в штативе в соответствии со способом обработки поверхности и местом сбора. В наименовании использовались пять сокращений для способа обработки (без обработки – «б/о», обработка водой – «В», обработка раствором хлоргексидина биглюконата – «Х_Г», обработка раствором школьного антисептика – «Ш_А» (для тестовой недели – «С_А»)) и пять сокращений для места сбора (ручка – «р», парта – «пX2», где X – нумерация ряда (1/2/3), в котором расположена исследуемая парта, а 2 – номер парты в ряду (для тестовой недели – «п1»)).

4. В соответствии с заранее составленными схемами сбора смывов с контактных поверхностей, представленными в итоговой таблице (Приложение II, Таблица № 2), выбрал необходимую парту или ручку и приступил к сбору смывов:

• взял пробирку с отметкой «б/о – п12», вынул смоченный пептонной водой тупфер и на заранее определённом по схеме участке зигзагообразными движениями собрал смыв, поместил тупфер с материалом в пробирку, плотно закрыв и опустив ватный тампон в питательную среду, поставил пробирку в штатив;

• аналогично провёл сбор смывов с участков без обработки для других парт;

• на всех исследуемых партах, согласно схеме, очистил участки для сбора смывов водой;

• взял пробирку с отметкой «В – п12», вынул смоченный пептонной водой тупфер и на заранее определённом по схеме участке зигзагообразными движениями собрал смыв, поместил тупфер с материалом в пробирку, плотно закрыв и опустив ватный тампон в питательную среду, поставил пробирку в штатив;

• аналогично провёл сбор смывов с участков, обработанных водой, для других парт;

• на всех исследуемых партах, согласно схеме, очистил участки для сбора смывов раствором хлоргексидина биглюконата;

• взял пробирку с отметкой «Х_Г – п12», вынул смоченный пептонной водой тупфер и на заранее определённом по схеме участке зигзагообразными движениями собрал смыв, поместил тупфер с материалом в пробирку, плотно закрыв и опустив ватный тампон в питательную среду, поставил пробирку в штатив;

• аналогично провёл сбор смывов с участков, обработанных раствором хлоргексидина биглюконата, для других парт;

• на всех исследуемых партах, согласно схеме, очистил участки для сбора смывов раствором школьного антисептика;

• взял пробирку с отметкой «Ш_А – п12», вынул смоченный пептонной водой тупфер и на заранее определённом по схеме участке зигзагообразными движениями собрал смыв, поместил тупфер с материалом в пробирку, плотно закрыв и опустив ватный тампон в питательную среду, поставил пробирку в штатив;

• аналогично провёл сбор смывов с участков, обработанных раствором школьного антисептика, для других парт;

• взял пробирку с отметкой «б/о – р», вынул смоченный пептонной водой тупфер и на заранее определённом по схеме участке спиралевидными движениями собрал смыв, поместил тупфер с материалом в пробирку, плотно закрыв и опустив ватный тампон в питательную среду, поставил пробирку в штатив;

• на ручке, согласно схеме, очистил участок для сбора смыва водой;

• взял пробирку с отметкой «В – р», вынул смоченный пептонной водой тупфер и на заранее определённом по схеме участке спиралевидными движениями собрал смыв, поместил тупфер с материалом в пробирку, плотно закрыв и опустив ватный тампон в питательную среду, поставил пробирку в штатив;

• на ручке, согласно схеме, очистил участки для сбора смывов раствором хлоргексидина биглюконата;

• взял пробирку с отметкой «Х_Г – р», вынул смоченный пептонной водой тупфер и на заранее определённом по схеме участке спиралевидными движениями собрал смыв, поместил тупфер с материалом в пробирку, плотно закрыв и опустив ватный тампон в питательную среду, поставил пробирку в штатив;

• на ручке, согласно схеме, очистил участки для сбора смывов раствором школьного антисептика;

• взял пробирку с отметкой «Ш_А – р2», вынул смоченный пептонной водой тупфер и на заранее определённом по схеме участке спиралевидными движениями собрал смыв, поместил тупфер с материалом в пробирку, плотно закрыв и опустив ватный тампон в питательную среду, поставил пробирку в штатив;

• занёс данные о месте и времени сбора в итоговую таблицу (Приложение II, Таблица № 2).

5. Собрав весь необходимый материал с контактных поверхностей кабинета биологии, убрал место сбора.

6. Поместил штатив с пробирками в переносной холодильник и доставил в лабораторию, где поставил их в термостат при температуре 37 ± 1°С на 24 АЧ часа для культивирования собранных микроорганизмов.

2. 1. 2. Проведение экспериментов на выявление ОМЧ

Исследования на ОМЧ необходимы для оценки общей бактериальной обсеменённости. Я включил данный тип исследований в свою проектную работу, чтобы доказать наличие бактерий на исследуемых мной контактных поверхностях школьного кабинета биологии.

С учётом знаний, полученных при изучении методических материалов, процесс исследования смывов на ОМЧ осуществлялся следующим образом:

1. Перед началом работы надел СИЗы и прошёл в грязную зону.

2. Открыл и подготовил ламинарный бокс к исследованиям.

3. Транспортировал заранее подготовленные поименованные стерильные чашки Петри с питательным Агаром (см. п. 3.1.4.) в ламинарный бокс (Приложение I, Фото 6).

4. Достал из термостата пробирки с материалом после 24 АЧ культивирования и перенёс их в ламинарный бокс.

5. Заметил в пробирках «б/о – ***» и «В – ***» для всех контактных поверхностей помутнение среды – признак наличия микроорганизмов, в пробирках «Х_Г – ***» и «Ш_А – ***» для всех контактных поверхностей и контрольном тесте среда осталась прозрачная.

6. Зажёг спиртовку и включил вытяжку.

7. Взял микробиологическую петлю и простерилизовал её в верхнем пламени горелки.

8. Открыл пробирку с отметкой «б/о – п12», держа в руке тупфер, опустил петлю в пробирку, взяв материал для исследования, и закрыл пробирку.

9. Взял соответствующую чашку Петри, открыл и нанёс материал зигзагообразными движениями при помощи микробиологической петли, покрыв всю площадь среды, закрыл чашку.

10. Простерилизовал микробиологическую петлю в верхнем пламени горелки.

11. Аналогичным образом пересеял материал для остальных пробирок, стерилизуя микробиологическую петлю после каждого посева.

12. Погасил спиртовку.

13. Перенёс и поставил чашки Петри с пересеянным материалом в термостат при температуре 37 ± 1°С на 48 АЧ для дальнейшего культивирования.

14. Поставил штатив с использованными пробирками в холодильную камеру.

15. Привёл в порядок ламинарный бокс, поставив в режим обеззараживания.

16. Покинул грязную зону через тамбур, сняв СИЗы и проведя личную дезинфекцию.

17. По истечению 48 АЧ вернулся в лабораторию.

18. Перед началом работы надел СИЗы и прошёл в грязную зону.

19. Достал готовые образцы из термостата на тележку.

20. Оценил полученные результаты исследования на наличие роста колоний (Приложение I, Фото 7, 8, 9) и занёс их в итоговую таблицу (Приложение II, Таблица № 2).

21. Достал из холодильной камеры штатив с использованными пробирками и вместе с отработанными чашками Петри поместил их в автоклав для стерилизации (Приложение I, Фото 1).

22. После стерилизации передал пробирки и чашки Петри в чистую зону.

23. Покинул грязную зону через тамбур, сняв СИЗы и проведя личную дезинфекцию.

24. Помыл ранее переданную посуду.

25. Проанализировал результаты исследования (Приложение II, Таблица № 2) и сделал выводы.

Выводы по исследованию на ОМЧ:

• На ОМЧ было посеяно 16 смывов, включавших в себя все виды обработки. Из них половина после посева имела колонии бактерий.

• Во всех пробах, полученных из смывов с необработанных или обработанных только водой контактных поверхностей школьного кабинета биологии, присутствовало множество колоний различных видов бактерий, следовательно контактные поверхности в школьном кабинете обсеменены.

• Все пробы, полученные из смывов с контактных поверхностей школьного кабинета биологии, которые были обработаны антисептическими/дезинфицирующими средствами (растворами хлоргексидина биглюконата и школьного антисептика), оказались чистыми (колонии на чашках Петри отсутствовали), значит выбранные мною антисептические/дезинфицирующие растворы после нанесения успешно выполняют свою функцию – дезинфекцию.

2. 1. 3. Проведение экспериментов на выявление БГКП

БГКП называют санитарно-показательными микроорганизмами, которые указывают на вероятность присутствия в смывах условно-патогенных бактерий, поэтому я включил исследования на БГКП в свою проектную работу.

Свои исследования на БГКП разбил на четыре блока экспериментов согласно основным химико-аналитическим показателям данных бактерий, ранее выделенных мною в таблицу (Приложение II, Таблица № 1).

С учётом знаний, полученных при изучении методических материалов, процесс исследований смывов на БГКП осуществлялся следующим образом (для всех экспериментальных недель):

1. Перед началом работы надел СИЗы и прошёл в грязную зону.

2. Открыл и подготовил ламинарный бокс к исследованиям.

3. Транспортировал заранее подготовленные поименованные стерильные чашки Петри со средой Эндо (см. п. 3.1.4.) в ламинарный бокс (Приложение I, Фото 6).

4. Достал из термостата пробирки с материалом после 24 АЧ культивирования и перенёс их в ламинарный бокс.

5. Заметил в пробирках «б/о – ***» и «В – ***» для всех контактных поверхностей помутнение среды – признак наличия микроорганизмов, в пробирках «Х_Г – ***» и «Ш_А – ***» для всех контактных поверхностей и контрольном тесте среда осталась прозрачная.

6. Зажёг спиртовку и включил вытяжку.

7. Взял микробиологическую петлю и простерилизовал её в верхнем пламени горелки.

8. Открыл пробирку с отметкой «б/о – п12», держа в руке тупфер, опустил петлю в пробирку, взяв материал для исследования, и закрыл пробирку.

9. Взял чашку Петри, открыл и нанёс материал зигзагообразными движениями при помощи микробиологической петли, покрыв всю площадь среды, закрыл чашку.

10. Простерилизовал микробиологическую петлю в верхнем пламени горелки.

11. Аналогичным образом пересеял материал для остальных пробирок, стерилизуя микробиологическую петлю после каждого посева.

12. Погасил спиртовку.

13. Перенёс и поставил чашки Петри с пересеянным материалом в термостат при температуре 37 ± 1°С на 48 АЧ для дальнейшего культивирования.

14. Поставил штатив с использованными пробирками в холодильную камеру.

15. Привёл в порядок ламинарный бокс, поставив в режим обеззараживания.

16. Покинул грязную зону через тамбур, сняв СИЗы и проведя личную дезинфекцию.

17. По истечению 48 АЧ вернулся в лабораторию.

18. Перед началом работы надел СИЗы и прошёл в грязную зону.

19. Достал готовые образцы из термостата на тележку.

20. Отсортировал микробиологические образцы по наличию роста колоний на них (Приложение I, Фото 10, 11, 12).

21. Отразил информацию о чистых пробах на БГКП в итоговой таблице (Приложение II, Таблица № 2), после убрав их в холодильную камеру.

22. Остальные пробы взял для последующих исследований, перенеся их в ламинарный бокс.

23. Также поставил в ламинарный бокс заранее заготовленные пробирки с лактозо-пептонной средой и средой Гисса (см. п 3.1.4.).

24. Зажёг спиртовку и включил вытяжку.

25. Блок 1: Исследование колоний на грам-принадлежность.

    1. Подготовил предметное стекло и 3% раствор КОН для проведения тестов на грам-принадлежность

    2. Взял микробиологическую петлю и простерилизовал её в верхнем пламени горелки.

    3. Нанёс при помощи микробиологической петли 3 капли 3% раствора КОН на предметно стекло.

    4. Простерилизовал микробиологическую петлю в верхнем пламени горелки.

    5. Открыл чашку Петри с отметкой «б/о – п12», петлёй взял материал для исследования (одинаковые колонии) и нанёс, смешав с каплями щёлочи на предметном стекле, до появления или отсутствия тягучей консистенции (появление тянущейся нити от стекла до петли – признак грамотрицательности бактерий).

    6. Результаты теста занёс в таблицу (Приложение II, Таблица № 2).

    7. Простерилизовал микробиологическую петлю в верхнем пламени горелки.

    8. Аналогичным образом провёл тест и оформил результаты для остальных однотипных групп колоний в каждой из чашек Петри, стерилизуя микробиологическую петлю после каждого теста колоний.

26. Блок 2: Исследование колоний на оксидазу.

    1. Подготовил отрезок фильтровальной бумаги смоченный 1% раствором n,n,n,n-тетраметил-n-фенилендиамина гидрохлорида для проведения тестов на оксидазу.

    2. Взял микробиологическую петлю и простерилизовал её в верхнем пламени горелки.

    3. Открыл чашку Петри с отметкой «б/о – п12», петлёй взял материал для исследования (одинаковые колонии) и нанёс на смоченную фильтровальную бумагу, наблюдая за изменением цвета (БГКП не изменяют цвет при взаимодействии с 1% раствором n,n,n,n-тетраметил-n-фенилендиамина гидрохлорида).

    4. Результаты теста занёс в таблицу (Приложение I, Таблица № 2).

    5. Простерилизовал микробиологическую петлю в верхнем пламени горелки.

    6. Аналогичным образом провёл тест и оформил результаты для остальных однотипных групп колоний в каждой из чашек Петри, стерилизуя микробиологическую петлю после каждого теста колоний.

27. Блок 3: Посев колоний для исследования на кислоту/газ.

    1. Подготовил штативы с пробирками для исследований, разделив посев при 37 ± 1°С и 44 ± 1°С на среду Гисса (см. п. 3.1.4.) для ОКБ и ТКБ (Приложение I, Фото 13).

    2. Взял микробиологическую петлю и простерилизовал её в верхнем пламени горелки.

    3. Открыл чашку Петри с отметкой «б/о – п12», петлёй взял материал для исследования (одинаковые колонии) и параллельно над племенем горелки для исключения погрешностей пересеял материал в пробирки на 37 ± 1°С и 44 ± 1°С.

    4. Закрыл пробирки и поставил в соответствующие штативы.

    5. Простерилизовал микробиологическую петлю в верхнем пламени горелки.

    6. Аналогичным образом провёл пересев для остальных однотипных групп колоний в каждой из чашек Петри, стерилизуя микробиологическую петлю после каждого пересева колоний.

    7. Пронумеровал пробирки.

28. Блок 4: Посев колоний для исследования на индол.

    1. Подготовил штатив с пробирками с лактозо-пептонной средой (см  п. 3.1.4.). для исследований при 44 ± 1°С (Приложение I, Фото 13).

    2. Взял микробиологическую петлю и простерилизовал её в верхнем пламени горелки.

    3. Открыл чашку Петри с отметкой «б/о – п12» петлёй взял материал для исследования (одинаковые колонии) и над племенем горелки для исключения погрешностей пересеял материал в пробирку.

    4. Закрыл пробирку и поставил в соответствующий штатив.

    5. Простерилизовал микробиологическую петлю в верхнем пламени горелки.

    6. Аналогичным образом провёл пересев для остальных однотипных групп колоний в каждой из чашек Петри, стерилизуя микробиологическую петлю после каждого пересева колоний.

    7. Пронумеровал пробирки.

29. Погасил спиртовку.

30. Перенёс и поставил пробирки с пересеянным материалом в термостат при температуре 37 ± 1°С и 44 ± 1°С на 72 АЧ для дальнейшего культивирования.

31. Поставил использованные чашки Петри и предметные стёкла в холодильную камеру.

32. Привёл в порядок ламинарный бокс, поставив в режим обеззараживания.

33. Покинул грязную зону через тамбур, сняв СИЗы и проведя личную дезинфекцию.

34. По истечению 72 АЧ вернулся в лабораторию.

35. Перед началом работы надел СИЗы и прошёл в грязную зону.

36. Достал готовые образцы из термостата на тележку.

37. Оценил полученные результаты исследования на изменения цвета и прозрачности сред (изменение цвета среды Гисса указывает на наличие кислоты, а помутнение лактозо-пептонной среды является признаком наличия индола), а так же выделения пузырьков газа (Приложение I, Фото  14, 15) и занёс их в итоговую таблицу (Приложение II, Таблица № 2).

38. Достал из холодильной камеры использованные чашки Петри, пробирки, предметные стёкла и вместе с отработанными в последних исследованиях пробирками поместил их в автоклав для стерилизации (Приложение I, Фото 1).

39. После стерилизации передал посуду в чистую зону.

40. Покинул грязную зону через тамбур, сняв СИЗы и проведя личную дезинфекцию.

41. Помыл ранее переданную посуду.

42. Проанализировал результаты исследования (Приложение II, Таблица № 2) и сделал выводы.

Выводы по исследованию о наличии БГКП:

• Из 52 проб, посеянных на выявление наличия колоний БГКП, половина являлась обсеменённой. В ходе работы были обнаружены 34 колонии микроорганизмов, 11 из которых являлись колониями БГКП, что составляет 32,35 % от общего числа колоний.

• В течение всего эксперимента на каждой неделе исследования хотя бы на одной из контактных поверхностей обнаруживались колонии БГКП, также по итоговой таблице видно, что за весь период каждая исследуемая контактная поверхность школьного кабинета биологии была обсеменена условно-патогенными бактериями хотя бы раз.

• Все пробы, полученные из смывов с контактных поверхностей школьного кабинета биологии, которые были обработаны антисептическими/дезинфицирующими средствами (растворами хлоргексидина биглюконата и школьного антисептика), оказались чистыми (колонии на чашках Петри отсутствовали), значит выбранные мною антисептические/дезинфицирующие растворы после нанесения успешно выполняют свою функцию – дезинфекцию.

2. 3. Разработка видеоролика с рекомендационным материалом

После получения результатов моих экспериментов я принял решение о разработке рекомендационного видеоролика по гигиене для учащихся нашей школы. Выбор такой целевой аудитории был определен несколькими факторами. Во-первых, ученики наиболее тесно контактируют с поверхностями, исследования которых были проведены в моём проекте. Во-вторых, на основе моих наблюдений именно учащиеся часто пренебрегают правилами личной гигиены: игнорируют мытьё рук, не соблюдают респираторный этикет, не используют сменную обувь, передают предметы личной гигиены для использования другим людям, а также имеют вредные привычки, связанные с личной гигиеной (грызут различные канцелярские предметы, прикасаются немытыми руками к слизистым оболочкам носа, рта и глаз и другие).

Создание и публикацию рекомендационного видеоролика я производил по следующему алгоритму:

1. Выбрал основные правила гигиены, которые хочу включить в свой видеоролик.

2. Расписал на бумаге основные этапы съёмки видео.

3. Произвёл съёмку необходимого видеоматериала.

4. Загрузил снятые кадры в видеоредактор CapCut.

5. Произвёл монтаж и редактуру видеофрагментов в видеоредакторе CapCut (Скриншот № 1).

Скриншот № 1.

6. Наложил эффекты, анимации, переходы и звук на итоговый видеоролик, а также добавил поясняющий текст к его фрагментам в видеоредакторе CapCut (Скриншот № 2).

Скриншот № 2.

7. Приготовил обложку видеоролика.

8. Экспортировал видеоролик (разрешение 4K, частота кадров 60fps, формат mp4) для возможности его дальнейшего размещения в сети Интернет (Скриншот № 3).

Скриншот № 3.

9. Создал заготовку поста в программе MS Word для публикации в сообществе школы в ВКонтакте (Скриншот № 4).

Скриншот № 4.

10. Согласовал заготовку поста и видеоролик с кураторами проекта.

11. Опубликовал итоговый пост с видеороликом в сообществе школы в ВКонтакте (Скриншот № 5).

Скриншот № 5.

12. Для упрощённого нахождения моего видеоматериала создал QR-код на пост в ВК (Приложение II, Видеоматериал № 1).

Мой пост с видеороликом напомнит учащимся школы о важности соблюдения правил личной гигиены. Данный материал можно использовать на тематических классных часах или уроках окружающего мира и биологии.

2. Заключение

За время работы над своим проектом я познакомился с таким санитарно-гигиеническим показателем, как общая микробная обсеменённость, узнал, как оно связано с инфекционными заболеваниями, ознакомился с классификацией, а также морфологическими, физиологическими и химико-аналитическими характеристиками некоторых условно-патогенных видов бактерий, рассмотрел меры профилактики инфекций в образовательных учреждениях, получил навыки работы в микробиологической лаборатории. В экспериментальной части проекта, проведя сбор и исследование смывов, смог получить практические данные об обсеменённости контактных поверхностей школьного кабинета биологии штаммами микроорганизмов, параллельно оценив эффективность работы выбранных мною антисептических/дезинфицирующих растворов после их нанесения. На основе полученных данных с опорой на наблюдения разработал видеоролик с рекомендациями по гигиене для учащихся школы. Этот материал можно использовать на тематических классных часах, уроках окружающего мира и биологии. Проделанной работой в рамках проекта я доволен, потому что решил все основные задачи проекта, и дополнительно приобрёл навыки в проведении лабораторных экспериментов, получил новые знания в области микробиологии. В перспективе было бы интересно расширить исследования в рамках выбранной темы, изучив влияние различных антисептических растворов на уровень обсеменённости контактных поверхностей с течением времени.

Таким образом, моя гипотеза о том, что контактные поверхности учебного класса загрязнены условно-патогенными и непатогенными бактериями, а также, что обработка поверхностей антисептическими/дезинфицирующими растворами на основе спирта и/или хлорсодержащих соединений значительно снижает микробную обсеменённость по сравнению с необработанными участками или участками, очищенными только водой, подтвердилась!

5. Библиографический список

1. Биология: для поступающих в вузы / Р.Г. Заяц, В.Э. Бутвиловский, В.В. Давыдов, И.В. Рачкрвская – Изд. 6-е. – Ростов н/Д: Феникс, 2022. – 639 с.

2. Биология: в 3 т. Т. 1 / Д. Тейлор, Н. Грин, У. Стаут; под ред. Р. Сопера; пер. 3-го англ. изд.  14-е изд. M.: Лаборатория знаний, 2022.  454 с.: ил.

3. Биология: в 3 т. Т. 2 / Д. Тейлор, Н. Грин, У. Стаут; под ред. Р. Сопера; пер. 3-го англ. изд.  14-е изд. М.: Лаборатория знаний, 2022.  435 с.: ил.

4. Биология: в 3 т. Т. 3 / Д. Тейлор, Н. Грин, У. Стаут; под ред. Р. Сопера; пер. 3-го англ. изд.  14-е изд. - М.: Лаборатория знаний, 2022.  451 с.: ил.

5. Иммунология: учебно-методический комплекс по дисциплине: учебное
   пособие / сост. Ю.В. Саранчина.  Абакан: Издательство ФГБОУ ВО «Хакасский государственный университет им. Н.Ф. Катанова», 2021.  288 с.

6. Медицинская микробиология, вирусология и иммунология. Атлас-руководство: Учебное пособие / Под ред. А.С. Быкова, В.В. Зверева.  Москва: ООО «Издательство «Медицинское информационное агентство», 2018.  416 с.: ил.

7. Биология в инфографике / О.Ч. Мазур. - Москв. 2021.  160 с.: ил.

8. Основы санитарной и фармацевтической микробиологии: учеб. пособие / Н.А. Правосудова, В.Л.  Мельников, Л.В. Мельников. – Пенза: Изд-во ПГУ, 2014.  118 с.

9. Методическое пособие по использованию лабораторного комплекса для учебной практической и проектной деятельности по биологии и экологии. Часть I. Базовый и углублённый уровни / Под ред проф. д.т.н. В.С. Пичугина.  М.: РА «ИЛЬФ», 2017.  247 с., ил.

10. МУ 2.1.4.1057-01: Организация внутреннего контроля качества санитарно- микробиологических исследований воды: Методические указания.  М.: Федеральный центр госсанэпиднадзора Минздрава России, 2001.  92 с.

11. MP 4.2.0220-20. 4.2: Методы контроля. Биологические и микробиологические факторы. Методы санитарно-бактериологического исследования микробной обсемененности объектов внешней среды. Методические рекомендации" (утв. Главным государственным санитарным врачом РФ 04.12.2020).

12. Сайт https://ru.wikipedia.org/wiki/Заглавная_страница – Википедия – свободная энциклопедия.

13. Сайт https://umschool.net/library/ – Умскул Учебник.

14. Сайт https://edu.sirius.online/#/ – Сириус.Курсы – Открытая онлайн-школа развития таланта.

15. Сайт https://neofamily.ru/biologiya/smart-directory/ – ЕГЭ-2026 Биология: теория для подготовки к ЕГЭ по Биологии с подробным объяснением тем – NeoFamily.

16. Сайт https://studfile.net/ – Файловый архив для студентов. StudFiles.

17. Сайт https://petritest.ru/gosty-dokumenty/sanitarnaya-mikrobiologiya-tekst-lektsij-kondakova-g-v – Санитарная микробиология. Текст лекций. Кондакова Г.В. – Петритест – Российские экспресс-тесты.

18. Сайт https://www.alkida.ru/blog/trebovaniya-k-uborke-v-shkole-po-sanpin-2026 – Требования к уборке в школе по СанПиН 2026: полный справочник | Алкида.

19. Сайт https://rospn.gov.ru/ – Роспотребнадзор.

Приложение I

Фотографии

Фото 1. Стерилизация посуды в автоклаве лаборатории

Фото 2, 3. Используемые антисептические растворы

Фото 4, 5. Доставка пробирок до места сбора и подготовка к сбору

Фото 6. Транспортировка чашек Петри с заготовленными питательными средами до ламинарного бокса

Фото 7, 8, 9. "Качественная" оценка результатов исследования на ОМЧ

 

Фото 10, 11, 12. "Качественная" оценка результатов роста колоний БГКП

Фото 13. Подготовка пробирок со средой Гисса и лактозо-пептонной средой перед исследованиями на индол и кислоту/газ

Фото 14, 15 Оценка результатов исследований на индол и кислоту/газ

Приложение II

Таблицы и видеоматериалы практической части проекта

Таблица № 1. Химико-аналитические показатели БГКП-принадлежности

Название вида бактерий	Химико-аналитические показатели
	Грам (±)	ОК (±)	Индол (±)	Кислота (±)
				Газ (±)
Escherichia coli	–	–	+	+ +
Citrobacter freundii	–	–	– (+)	± ±
Enterobacter aerogenes	–	–	–	+ +
Klebsiella pneumoniae	–	–	–	± ±

Таблица № 2. Итоговая таблица по экспериментальному этапу практической части исследовательского проекта

QR-код с ссылкой на таблицу

Видеоматериал № 1. Видеоролик с рекомендациями по гигиене для учащихся школы

QR-код с ссылкой на пост в ВК